亮抑酶肽鹽酸鹽 ,≥90% (HPLC)操作步驟

亮抑酶肽鹽酸鹽 ,≥90% (HPLC)操作步驟:

1. 勻漿處理:a.組織 將組織在液氮中磨碎,每50-100mg組織加入1ml TRIzol,用勻漿儀(yi) 進行勻漿處理。樣品體(ti) 積不應超過TRIzol體(ti) 積10℅。

b.單層培養(yang) 細胞 直接在培養(yang) 板中加入TRIzol裂解細胞，每10cm2麵積(即3.5cm直徑的培養(yang) 板)加1ml，用移液器吸打幾次。TRIzol的用量應根據培養(yang) 板麵積而定，不取決(jue) 於(yu) 細胞數。TRIzol加量不足可能導致提取的RNA有DNA汙染。

c．細胞懸液 離心收集細胞，每5-10×106動物、植物、酵母細胞或1×107細菌細胞加入1ml TRIzol，反複吸打。加TRIzol之前不要洗滌細胞以免mRNA降解。一些酵母和細菌細胞需用勻漿儀(yi) 處理。產(chan) 品僅(jin) 用於(yu) 科研

2．將勻漿樣品在室溫（15-30℃）放置5分鍾，使核酸蛋白複合物完全分離。

3．可選步驟：如樣品中含有較多蛋白質，脂肪，多糖或胞外物質（肌肉，植物結節部分等）可於(yu) 2-8℃10000×g離心10分鍾，取上清。離心得到的沉澱中包括細胞外膜，多糖，高分子量DNA，上清中含有RNA。處理脂肪組織時，上層有大量油脂應去除。取澄清的勻漿液進行下一步操作。

5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml，劇烈振蕩15秒，室溫放置3分鍾。

6. 2-8℃10000×g離心15分鍾。樣品分為(wei) 三層：底層為(wei) 黃色有機相，上層為(wei) 無色水相和一個(ge) 中間層。RNA主要在水相中，水相體(ti) 積約為(wei) 所用TRIzol試劑的60℅。

7. 把水相轉移到新管中，如要分離DNA和蛋白質可保留有機相，進一步操作見後。用異丙醇沉澱水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml異丙醇，室溫放置10分鍾。

8. 2-8℃10000×g離心10分鍾，離心前看不出RNA沉澱，離心後在管側(ce) 和管底出現膠狀沉澱。移去上清。